AAV病毒包装

AAV病毒包装

摘要 : (一) AAV-293细胞的冻存 (二)AAV-293 细胞的传代 (三)AAV-293 细胞的复苏 (四)AAV包装和浓缩

(一) AAV-293细胞的冻存

随着传代的次数增加，AAV-293细胞会出现生长状态下降、突变等。为了防止此类现象的出现，我们需要在开始就对细胞进行大量冻存，以保证实验的稳定性和持续性。在细胞对数生长期进行冻存，增加细胞复苏成活率。

1、去掉

细胞培养上清液，加入PBS 洗去残留的培养基;

2、加入0.25%的胰酶，消化1~2min 后，镜下观察细胞变圆，细胞间间隙加大时，去除胰酶，加入新鲜培养基吹打混匀，移入离心管中。

3、细胞计数，将细胞全部晃下，加入 3mL 37 ℃ 预热的 10% DMEM，用 10mL 移液管进行吹打，较大力吹打 6-8 次即可，不留死角，之后，将所有细胞吸出，置于15mL 离心管中，取 50ul 混匀后的细胞于 1.5mLeppendorf管中，加入 450ul 10% DMEM，即为 10 倍稀释，混匀，取 10ul 细胞于计数板中计数。计数板上共 4 大格，每大格 16 小格。计数时，4 大格均计数，总数除以 4(得每大格细胞数)，再乘以 10(10 倍稀释)，即为实际 n 万/mL 细胞浓度。

4、细胞离心，1000 rpm/min，5min。去掉上清。

5、根据细胞计数,结果加入细胞冻存液(70%完全培养基+20%FBS+10%DMSO)重悬细胞，密度为3 x 106 个/ml。

6、分装进细胞冻存管，放入冻存盒中，放入-80℃超低温冰箱。

7、第二天将细胞放于液氮罐中长久保存，并作记录。保存过程中，要不时复苏细胞检测细胞存活率，观察细胞状态等。

(二)AAV-293 细胞的传代

当细胞生长到汇合率达到 80%~90%时需要对细胞进行传代操作，以扩大细胞数量，维持细胞良好的生长状态。

1、消化细胞，方法同细胞冻存。

2、细胞离心结束后，加入完全培养基重悬。

3、根据具体情况，将细胞分到10cm 培养皿中，每个培养皿补足到10ml 培养基。

(三)AAV-293 细胞的复苏

当细胞传代次数过多，细胞状态变差时，或者细胞出现污染事故时，需要丢弃并对最初冻存的细胞进行复苏。

1、设置温度为37~42℃的水浴。

2、查看细胞库记录，根据记录从液氮罐中取出冻存的细胞(需戴上棉手套，防止被冻伤)，迅速丢入水浴锅中并快速晃动，尽量在1~2min 内使细胞溶液完全

溶解。

3、将细胞溶液转移到15ml 离心管中，并在其中加上1ml 新鲜的完全培养基，混匀后离心，1000 rpm/min，5min。

4、去掉上清，加入5ml 新鲜的完全培养基，混匀沉淀后，转入6 cm 培养皿。

5、将培养皿平稳放入37℃、5% CO2 和95%相对湿度的培养箱中培养。

6、第二天观察细胞存活率。给细胞换一下培养基。以后每天观察细胞生长情况。

(四)AAV包装和浓缩

1. 质粒扩增

构建好的AAV载体、包装质粒和辅助质粒需经过大量抽提， 浓度大于1ug/ul，A260/280 在1.7-1.8 间方可用以包毒。推荐使用Qiagen 大抽试剂盒进行质粒的大量去内毒素抽提。

2. 传AAV-293细胞

将培养AAV-293 细胞T75 瓶中的培养基吸净，加入2mL 4 度冰箱取出的0.25%胰酶，使其均匀覆盖瓶底，置于37 度培养箱中3-5min，取出，摇晃可发现细胞于底部脱离，将其全部晃下，加入3mL 37 度水浴中预热的10% DMEM，移液枪用10mL 移液管进行吹打，较大力吹打6-8 次即可，不留死角，瓶口处较难吹打可将移液管对准培口，小力将培养基打出即可覆盖到接近瓶口的细胞。之后，将所有细胞吸出，置于15mL 离心管中，取50ul 混匀后的细胞于1.5mL eppendorf 管中，加入450ul 10% DMEM，即为10 倍稀释，混匀，取10ul 细胞于计数板中计数。计数板上共4 大格，每大格16 小格。计数时，4 大格均计数，总数除以4(得每大格细胞数)，再乘以10(10 倍稀释)，即为实际n 万/mL 细胞浓度。传代当天记为第一天，若第二天进行转染，铺900-1000 万/T75;若第三天转染，铺350-400 万/T75。每瓶T75 加10mL 10%DMEM 培养基。转染当天观察细胞密度，80-90%满即可进行转染。转染前无需换培养基。

3. 做脂转complex

试剂名称 试剂数量

载体质粒 5ul(1.0ug/ul)

包装质粒 5ul(1.0ug/ul)

辅助质粒 5ul(1.0ug/ul)

注：LipofiterTM转染试剂为汉恒生物产品，使用说明参考LipofiterTM说明书。

4. AAV 病毒收毒：

病毒颗粒同时存在于包装细胞和培养上清中。可以将细胞和培养上清都收集下来以获得最好的收率。

1) 准备一个干冰乙醇浴(将乙醇倾入装有干冰的泡沫盒即可，也可用液氮替代干冰乙醇浴)和37°C 水浴;

2) 将产毒的细胞连同培养基一同收集到一个15ml 的离心管中。收集细胞时，将培养盘倾斜一定角度将细胞刮到培养基中;

3) 1000 rpm/min，离心3 分钟，分离细胞和上清，将上清另外存放，细胞用1ml PBS 重悬;

4) 将细胞悬浮液在干冰乙醇浴和37°C 水浴中反复转移，冻融四次。每次融解后稍加震荡。注意：每次凝固和解冻大概需要十分钟的时间。

5. AAV 病毒浓缩：

1) 10,000 g 离心去除细胞碎片，将离心上清转移到一个新离心管中。

2) 将两次收集的上清混合在一起，用 0.45um 滤器过滤除杂质

3) 加入 1/2 体积的 1M NaCl，10% PEG8000 溶液，混合均匀，4度过夜

4) 12,000 rpm 离心 2h，弃上清，病毒沉淀用适量的 PBS 溶液溶解，待完全溶解后 用 0.22um 滤器过滤除菌。

5) 加入 Benzonase 核酸酶消化去除残留的质粒DNA(终浓度为50 U/ml)。合上管盖，颠倒几次以充分混合。在37 °C 孵育30 分钟;

6) 用 0.45 μm 过滤头过滤，取滤出液，即为浓缩的AAV病毒。

6. AAV的纯化

1) 向病毒浓缩液中添加固体 CsCl 直到密度为1.41 g/ml(折射率为1.372);

2) 将样品加入到超速离心管中，用预先配好的 1.41 g/ml CsCl 溶液将离心管剩余空间填满;

3) 在 175,000 g 下离心24 小时，以形成密度梯度。按顺序分步收集不同密度的样品，取样进行滴度测定。收集富集有AAV 颗粒的组分;

4) 重复上述过程一次。

5)将病毒装入100 kDa的透析袋，4度透析脱盐过夜。此即为纯化的AAV病毒

AAV病毒包装滴度测定(采用 Q-PCR 法)

1)取 20ul 浓缩病毒液，加入 1ul RNAse-free DNAse，混匀，37℃水浴反应30min。

2)4℃，12 000 rpm/min，离心 10 min，取 10ul 上清到另一个无菌的 1.5ml EP 管 中。

3)加入 90ul Dilution Buffer(1 mM Tris-HCl, pH 8.0，0.1 mM EDTA，150 mM NaCl)，混匀，37℃金属浴反应 30min。

4)自然冷却至室温，加入 1ul 蛋白酶 K，65℃水浴反应 1h。

5)100℃金属浴反应 10min，自然冷却至室温。

6)进行 Q-PCR 检测滴度。

AAV病毒的储存、稀释

1. 病毒的储存：

收到病毒液后在很短时间内即使用腺相关病毒进行实验，可以将病毒暂时放置于 4℃保存;如需长期保存请放置于-80℃(病毒置于冻存管，并 使用封口膜封口)。

1)病毒可以存放于-80℃ 6 个月以上;但如果病毒储存时间超过 6个月，建议在使用前需要重新测定病毒滴度。

2)反复冻融会降低病毒滴度：每次冻融会降低病毒滴度10%;因此在病毒使用过程中应尽量避免反复冻融，为避免反复冻融，建议收到病毒后按照每次的 使用量进行分装。

2. 病毒的稀释：

如果需要稀释病毒，请将病毒取出置于冰浴融解后，使用 PBS 缓冲液或培养目的细胞无血清培养基(含血清或含双抗不影响病毒感染)。混匀分 装后 4℃保存(请尽量在三天内用

完) 分装后使用。

AAV使用安全注意事项

1.病毒操作时最好使用生物安全柜。如果使用普通超净工作台操作病毒，请不 要打开排风机。

2.病毒操作时请穿实验服，带口罩和手套。

3.操作病毒时特别小心不要产生气雾或飞溅。如果操作时超净工作台有病毒污染，请立即用 70%乙醇加 1% SDS 溶液擦拭干净。接触过病毒的枪头、离心管、培养板、培养液等请用 84 消毒液或 1% SDS 中浸泡过夜后弃去。

4.用显微镜观察细胞感染情况时应遵从以下步骤：拧紧培养瓶或盖紧培养板。 用 70%乙醇清理培养瓶外壁后到显微镜处观察拍照。离开显微镜实验台之前，用70%乙醇清理显微镜实验台。

5.如需要离心，应使用密封性好的离心管，或者用封口膜封口后离心，而且尽 量使用组织培养室内的离心机。

6.脱掉手套后，用肥皂和水清洗双手。